مجله جنگل ایران

مجله جنگل ایران

بردباری نونهال‌های بلوط ایرانی (Quercus brantii Lindl.) تلقیح‌شده با قارچ اکتومیکوریز ترافل تابستانه (Tuber aestivum Vittad.) تحت تنش خشکی

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان
1 دانشجوی دکتری جنگل‌شناسی و اکولوژی جنگل، دانشکدۀ منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
2 دانشیار، دانشکدۀ منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
3 استاد، گروه بیماری‌شناسی گیاهی، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
4 استاد، دانشکدۀ جنگلداری، دانشگاه ایالتی اورگان، کوروالیس، ایالات متحدۀ آمریکا
چکیده
مقدمه: قارچ‌های اکتومیکوریز ترافل (Tuber spp.) می‌توانند با درختان خانوادۀ بلوط رابطۀ همزیستی قوی برقرار کنند و به‌موجب این ارتباط دوجانبه، امکان رشد بهتر و مقاومت بیشتر در برابر تنش‌های زیستی و غیرزیستی نیز فراهم می‌شود. قارچ‌های ترافل از نظر اقتصادی نیز پرارزش‌اند. این تحقیق با هدف بررسی میزان برقراری همزیستی اکتومیکوریزی بلوط ایرانی با قارچ ترافل تابستانه گونۀ Tuber aestivum و نیز ارزیابی میزان بردباری نونهال‌های بلوط ایرانی تلقیح‌شده با این قارچ تحت تنش خشکی با سنجش پارامترهای مورفوفیزیولوژیک آنها انجام گرفت.
مواد و روش‌ها: نمونه‌های قارچ ترافل تابستانه از گونه‌های بلوط بلندمازو (Quercus castaneifolia C.A.Mey.)، ولیک (Crataegus monogyna Jacq.) و کاج سیاه (Pinus nigra J.F.Arnold.) در استان مازندران جمع‌آوری شدند و ارزیابی مورفولوژیکی، میکروسکوپی و مولکولی به‌منظور تأیید گونه انجام گرفت. سپس مایۀ تلقیح از ترافل‌ها تهیه و ریشۀ نونهال‌های دوماهۀ بلوط ایرانی با 10 میلی‌لیتر مایه آغشته شد. پس از تشکیل میکوریزا روی ریشۀ نهال‌ها بعد از یک سال، تنش خشکی (25، 50 و 75 درصد ظرفیت زراعی) به‌مدت سه ماه اعمال‌ شد. نمونه‌برداری در هر مرحله به‌صورت تصادفی با انتخاب پنج اصله نمونۀ شاهد و پنج اصله نمونۀ تلقیح‌شده با قارچ ترافل تابستانه (T.aestivum) انجام گرفت. پس از شست‌وشوی ریشۀ نهال‌ها، با استفاده از استریو میکروسکوپ ریشه‌ها بررسی و میزان همزیستی آن‌ها ثبت شد و در ادامه با استخراج DNA از ریشۀ نهال‌ها با روش CTAB و انجام واکنش زنجیره‌ای پلیمراز (PCR) موفقیت گونه تلقیح‌شده تأیید شد. درنهایت پارامترهای مختلف رویشی و بیوشیمیایی نهال‌ها شامل ارتفاع نهال، قطر یقۀ نهال، زی‌توده اندام هوایی و ریشه، تعداد برگ‌ها، محتوای نسبی آب (RWC) و محتوای کلروفیل به‌منظور ارزیابی سلامت و رشد گیاه اندازه‌گیری شدند. افزون‌بر آن، مقدار پروکسید هیدروژن (H₂O₂)، مالون ‌دی‌آلدهید (MDA) به‌عنوان شاخص تنش اکسیداتیو و پرولین نیز به‌عنوان شاخصی از تحمل به تنش تعیین شدند. فعالیت آنزیم‌های آنتی‌اکسیدانی شامل کاتالاز (CAT)، سوپراکسیددیسموتاز (SOD) و پراکسیداز (POD) نیز به‌منظور ارزیابی سازوکارهای دفاعی گیاه در برابر استرس اکسیداتیو سنجش شدند.
 یافته‌ها: تلقیح نونهال‌های بلوط ایرانی با ترافل تابستانه در همۀ سطوح تنش خشکی سبب بهبود صفات رویشی نسبت به تیمار شاهد شد، البته حد اثرگذاری این قارچ در تیمار تنش خشکی 25 درصد ظرفیت زراعی، نسبت به تنش 50 درصد ظرفیت زراعی کمتر بود. تلقیح با ترافل تابستانه با افزایش 3/2 برابری وزن خشک اندام هوایی و افزایش 8/1 برابری وزن خشک ریشه در تنش خشکی 50 درصد ظرفیت زراعی، بیشترین تأثیر را داشت. مایه‌زنی ریشۀ نهال‌های بلوط با ترافل تابستانه مقدار کلروفیل a، b و کل را به‌ترتیب 17، 11 و 15 درصد نسبت به تیمار شاهد افزایش داد. تلقیح بلوط ایرانی با ترافل تابستانه میزان فعالیت آنزیم کاتالاز، پراکسیداز و سوپراکسیددیسموتاز را به‌ترتیب 30، 23 و 13 درصد نسبت به تیمار شاهد افزایش داد. همچنین تیمار تلقیح با ترافل تابستانه موجب کاهش 19 و 10 درصدی مقدار مالون دی‌آلدهید و پروکسید هیدروژن در شرایط تنش شدید (25 درصد ظرفیت ‌زراعی) شد.
نتیجه‌گیری: با توجه ‌به یافته‌های این پژوهش، به نظر می‌رسد قارچ ترافل تابستانه توانسته با افزایش فعالیت آنزیم‌های آنتی‌اکسیدانی و تأمین آب بیشتر برای نهال‌ها در تنش متوسط و حتی شدید اثرهای مخرب کمبود آب بر صفات نهال‌های بلوط ایرانی را کاهش دهد. پاسخ مناسب نهال‌های بلوط ایرانی به تلقیح اکتومیکوریزایی قارچ ترافل تابستانه و کمک به بردباری نهال‌ها در برابر تنش خشکی می‌تواند یکی از راهبردهای مناسب برای جنگلکاری باشد و از اثرهای مثبت آن در بهره‌وری اقتصادی جامعۀ محلی و امکان توسعۀ مشارکت مردمی در حفظ و توسعۀ نهال‌ها بهره برد.
کلیدواژه‌ها

موضوعات


عنوان مقاله English

Assessing Drought Stress Tolerance in Persian Oak Seedlings (Quercus brantii Lindl) Inoculated with Summer Truffle Ectomycorrhizal Fungus (Tuber aestivumVittad)

نویسندگان English

ِD. Sepahvand 1
V. Etemad 2
A. Shirvany 2
M. Javan-Nikkhah 3
T. DeLuca 4
1 Ph.D. candidate., Dept. of Forestry, Faculty of Natural Resources, University of Tehran, Karaj, I. R. Iran
2 Associate Prof., Dept. of Forestry, Faculty of Natural Resources, University of Tehran, Karaj, I. R. Iran
3 Prof., Dept. Mycology and Plant Pathology, Faculty of Agriculture, University of Tehran, Karaj, I. R. Iran
4 Prof., Dept. of Forestry, , University of Oregon State, Corvallis, USA
چکیده English

Introduction: Ectomycorrhizal truffle fungi (Tuber spp.) can establish a strong symbiotic relationship with trees in the beech family (Fagaceae), which enhances the trees growth and resilience against both biotic and abiotic stresses. Moreover, truffle fungi are economically valuable. This study aimed to assess the ectomycorrhizal  colonization between Persian oak (Quercus brantii)  and the summer truffle fungus (Tuber aestivum), as well as to evaluate the drought tolerance of Persian oak seedlings by measuring their morpho-physiological parameters.
Materials and Methods: Summer truffle samples were collected from a planted area of Quercus castaneifolia C.A.Mey., Crataegus monogyna Jacq., and Pinus nigra J.F.Arnold. in Mazandaran Province. Morphological, microscopic, and molecular assessments were conducted to confirm the species. Truffle inoculum was prepared and 10 mL of inoculum was injected into the roots of two-month-old Persian oak seedlings. After one year, during which mycorrhizae had formed, drought stress (25%, 50%, and 75% of field capacity) was applied for three months. Random sampling was performed by selecting five control seedlings and five inoculated with the summer truffle (T. aestivum). After washing the roots, they were examined under a stereomicroscope, and the percentage of colonization was recorded. DNA was extracted from the seedlings’ roots using the CTAB method, and the success of the inoculation  was confirmed by polymerase chain reaction (PCR). Finally, various growth and biochemical parameters of the seedlings were measured to assess plant health and development. These parameters included seedling height, collar diameter,  shoot and root biomass, number of leaves, relative water content (RWC), and chlorophyll content. Additionally, oxidative stress indices such as hydrogen peroxide (H₂O₂), malondialdehyde (MDA), and proline (as an index of stress tolerance) were determined. The activities of antioxidant enzymes, including catalase (CAT), superoxide dismutase (SOD), and peroxidase (POD), were also measured to evaluate the plant’s defense mechanisms against oxidative stress.
Results: Inoculating Persian oak seedlings with the summer truffle improved all growth traits compared to the control under all levels of drought stress, though the effect was less pronounced at 25% field capacity than at 50% field capacity. Inoculation with the summer truffle resulted in a 2.3-fold increase in shoot dry weight and a 1.8-fold increase in root dry weight under 50% field capacity drought stress, showing the most significant effect. Root inoculation with the summer truffle increased chlorophyll a, chlorophyll b, and total chlorophyll content by 17 mg, 11 mg, and 15 mg, respectively, compared to the control. Inoculation of Persian oak with the summer truffle increased CAT, POD, and SOD activities by 30%, 23%, and 13%, respectively, compared to the control. Additionally, inoculation with the summer truffle reduced MDA and H₂O₂ levels by 19% and 10%, respectively, under severe drought stress (25% field capacity).
 
Conclusion: The summer truffle (Tuber aestivum) appears to have alleviated the detrimental effects of water deficit on the physiological traits of Persian oak seedlings, even under moderate to severe drought stress. The positive response of Persian oak seedlings to ectomycorrhizal inoculation with the summer truffle and their enhanced drought tolerance, this fungus can be used for planting mycorrhizal seedlings. The positive effects of this experiment could benefit local communities economically and encourage public participation in the conservation and development of these seedlings.

کلیدواژه‌ها English

Antioxidant enzymes
Drought stress
Ectomycorrhizal symbiosis
Truffle
Zagros restoration
Agerer, R. (2006). Fungal relationships and structural identity of their ectomycorrhizae. Mycological progress5, 67-107. https://doi.org/10.1007/s11557-006-0505-x
Álvarez-Lafuente, A., Benito-Matías, L.F., Peñuelas-Rubira, J.L., & Suz, L.M. (2018). Multi-cropping edible truffles and sweet chestnuts: Production of high-quality Castanea sativa seedlings inoculated with Tuber aestivum, its ecotype T. uncinatum, T. brumale, and T. macrosporumMycorrhiza28(1), 29-38. https://doi.org/10.1007/s00572-017-0805-9
Arnon, D.I. (1949). Copper enzymes in isolated chloroplasts. Polyphenoloxidase in Beta vulgarisPlant physiology24(1), 1. https://doi.org/10.1104/pp.24.1.1
Bach, C., Beacco, P., Cammaletti, P., Babel-Chen, Z., Levesque, E., Todesco, F., Cotton, C., Robin, B., & Murat, C. (2021). First production of Italian white truffle (Tuber magnatum Pico) ascocarps in an orchard outside its natural range distribution in France. Mycorrhiza31, 383-388. https://doi.org/10.1007/s00572-020-01013-2
Bates, L.S., Waldren, R.P.A., & Teare, I.D. (1973). Rapid determination of free proline for water-stress studies. Plant and soil39, 205-207. https://doi.org/10.1007/BF00018060
Beauchamp, C., & Fridovich, I. (1971). Superoxide dismutase: improved assays and an assay applicable to acrylamide gels. Analytical biochemistry44(1), 276-287. https://doi.org/10.1016/0003-2697(71)90370-8
Bergmeyer, H.U. (Ed.). (2012). Methods of enzymatic analysis. Elsevier
Bradford, M.M. (1976). A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical biochemistry72(1-2), 248-254. https://doi.org/10.1016/0003-2697(76)90527-3
Cassel, D.K., & Nielsen, D.R. (1986). Field capacity and available water capacity. Methods of soil analysis: Part 1 Physical and mineralogical methods5, 901-926. https://doi.org/10.2136/sssabookser5.1.2ed.c36
Cotrozzi, L., Remorini, D., Pellegrini, E., Landi, M., Massai, R., Nali, C., Guidi, L., & Lorenzini, G. (2016). Variations in physiological and biochemical traits of oak seedlings grown under drought and ozone stress. Physiologia plantarum157(1), 69-84. https://doi.org/10.1111/ppl.12402
Dib, S., & Fortas, Z. (2019). Inoculation with desert truffles increases growth of the forest seedlings Quercus ilex L. and Pinus halepensis M. Asian Journal of Microbiology Biotechnology & Environmental Sciences21, 907-914.
Fu, Y., Li, X., Li, Q., Wu, H., Xiong, C., Geng, Q., Sun, H., & Sun, Q. (2016). Soil microbial communities of three major Chinese truffles in southwest China. Canadian Journal of Microbiology62(11), 970-979. https://doi.org/10.1139/cjm-2016-0139
Gardes, M., & Bruns, T.D. (1993). ITS primers with enhanced specificity for basidiomycetes‐application to the identification of mycorrhizae and rusts. Molecular ecology2(2), 113-118.  https://doi.org/10.1111/j.1365-294X.1993.tb00005.x
Ghanbary, E., Kouchaksaraei, M.T., Guidi, L., Mirabolfathy, M., Etemad, V., Sanavi, S.A.M.M., & Struve, D. (2018). Change in biochemical parameters of Persian oak (Quercus brantii Lindl.) seedlings inoculated by pathogens of charcoal disease under water deficit conditions. Trees32, 1595-1608. https://doi.org/10.1007/s00468-018-1736-6
Ghanbary, E., Tabari Kouchaksaraei, M., Zarafshar, M., Bader, K.F.M., Mirabolfathy, M., & Ziaei, M. (2020). Differential physiological and biochemical responses of Quercus infectoria and Q. libani to drought and charcoal disease. Physiologia plantarum168(4), 876-892. https://doi.org/10.1111/ppl.13027
Giannopolitis, C.N., & Ries, S.K. (1977). Superoxide dismutases: II. Purification and quantitative relationship with water-soluble protein in seedlings. Plant physiology59(2), 315-318. https://doi.org/10.1104/pp.59.2.315
Gryndler, M., Černá, L., Bukovská, P., Hršelová, H., & Jansa, J. (2014). Tuber aestivum association with non-host roots. Mycorrhiza24, 603-610. https://doi.org/10.1007/s00572-014-0580-9
Haase, D., & Hellwig, R. (2022). Effects of heat and drought stress on the health status of six urban street tree species in Leipzig, Germany. Trees, Forests and People8, 100252. https://doi.org/10.1016/j.tfp.2022.100252
Hackbarth, C., Soffiatti, P., Zanette, F., Floh, E.I.S., Macedo, A.F., & Laureano, H.A. (2018). Free amino acid content in trunk, branches and branchlets of Araucaria angustifolia (Araucariaceae). Journal of Forestry Research29, 1489-1496. https://doi.org/10.1007/s11676-017-0581-6
Hall, I.R., & Zambonelli, A. (2012). Laying the Foundations, (eds) Edible Ectomycorrhizal Mushrooms. Soil Biology, 34. Springer, Berlin, Heidelberg. https://doi.org/10.1007/978-3-642-33823-61
He, F., Sheng, M., & Tang, M. (2017). Effects of Rhizophagus irregularis on photosynthesis and antioxidative enzymatic system in Robinia pseudoacacia L. under drought stress. Frontiers in Plant Science8, 183. https://doi.org/10.3389/fpls.2017.00183
Hodges, D.M., DeLong, J.M., Forney, C.F., & Prange, R.K. (1999). Improving the thiobarbituric acid-reactive-substances assay for estimating lipid peroxidation in plant tissues containing anthocyanin and other interfering compounds. Planta207, 604-611. https://doi.org/10.1007/s004250050524
Huang, Y., Zou, J., Kang, Z., Zhang, X., Penttinen, P., & Li, X. (2021). Effects of truffle inoculation on a nursery culture substrate environment and seedling of Carya illinoinensisFungal Biology125(7), 576-584.
Iotti, M., Piattoni, F., & Zambonelli, A. (2013). Techniques for host plant inoculation with truffles and other edible ectomycorrhizal mushrooms. In Edible Ectomycorrhizal Mushrooms: Current Knowledge and Future Prospects (145-161). Berlin, Heidelberg: Springer Berlin Heidelberg. https://doi.org/10.1007/978-3-642-33823-6_9
Jafarnia, S., Akbarinia, M., Hosseinpour, B., Modarres Sanavi, S.A.M., & Salami, S.A. (2018). Effect of drought stress on some growth, morphological, physiological, and biochemical parameters of two different populations of Quercus brantiiForest-Biogeosciences and Forestry11(2), 212. https://doi.org/10.3832/ifor2496-010
Jamali, S. (2017). First report of identification and molecular characterization of Tuber aestivum in Iran. Agroforestry Systems91, 335-343. https://doi.org/10.1007/s10457-016-9932-0
JM, P. (1970). Improved procedures for clearing roots and staining parasitic and vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi for rapid assessment of infection. Trans. British Mycological Society55, 158-160.
Karimi, A., Tabari, M., Javanmard, Z., & Bader, M.K.F. (2022). Drought effects on morpho-physiological and biochemical traits in persian oak and black poplar seedlings. Forests13(3), 399. https://doi.org/10.3390/f13030399
Kennedy, P. (2010). Ectomycorrhizal fungi and interspecific competition: species interactions, community structure, coexistence mechanisms, and future research directions. New Phytologist187(4), 895-910. https://doi.org/10.1111/j.1469-8137.2010.03399.x
Krishna, H., Singh, S.K., Sharma, R.R., Khawale, R.N., Grover, M., & Patel, V.B. (2005). Biochemical changes in micropropagated grape (Vitis vinifera L.) plantlets due to arbuscular-mycorrhizal fungi (AMF) inoculation during ex vitro acclimatization. Scientia horticulturae106(4), 554-567. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2005.05.009
Lilleskov, E.A., Hobbie, E.A., & Horton, T.R. (2011). Conservation of ectomycorrhizal fungi: exploring the linkages between functional and taxonomic responses to anthropogenic N deposition. Fungal ecology4(2), 174-183. https://doi.org/10.1016/j.funeco.2010.09.008
Navarro-Ródenas, A., Bárzana, G., Nicolás, E., Carra, A., Schubert, A., & Morte, A. (2013). Expression analysis of aquaporins from desert truffle mycorrhizal symbiosis reveals a fine-tuned regulation under drought. Molecular Plant-Microbe Interactions26(9), 1068-1078. https://doi.org/10.1094/MPMI-07-12-0178-R
Pegler, D.N., Spooner, B.M., & Young, T.W. (1993). British truffles: a revision of british hypogeous fungi, Kew Royal Botanic Gardens.
Percudani, R., Trevisi, A., Zambonelli, A., & Ottonello, S. (1999). Molecular phylogeny of truffles (Pezizales: Terfeziaceae, Tuberaceae) derived from nuclear rDNA sequence analysis. Molecular phylogenetics and evolution13(1), 169-180. https://doi.org/10.1006/mpev.1999.0638
Reuveni, R. (2017). Biochemical markers for disease resistance. In Molecular methods in plant pathology. 99-114, CRC Press. https://doi.org/10.1201/9780203746523
Reyna, S., & Garcia-Barreda, S. (2014). Black truffle cultivation: a global reality. Forest systems23(2), 317-328. https://doi.org/10.5424/fs/2014232-04771
Sánchez, F.J., Manzanares, M., de Andres, E.F., Tenorio, J.L., & Ayerbe, L. (1998). Turgor maintenance, osmotic adjustment and soluble sugar and proline accumulation in 49 pea cultivars in response to water stress. Field crops research59(3), 225-235. https://doi.org/10.1016/S0378-4290(98)00125-7
Savi, T., Cotrozzi, L., Beruzzi, S., Nali, C., & Bove, F. (2020). Ecophysiological and biochemical traits of Quercus ilex trees growing under urban stress conditions. Agrochimica: International Journal of Plant Chemistry, Soil Science and Plant Nutrition of the University of Pisa, 64(1), 41-57.
Schneider‐Maunoury, L., Deveau, A., Moreno, M., Todesco, F., Belmondo, S., Murat, C., & Selosse, M.A. (2020). Two ectomycorrhizal truffles, Tuber melanosporum and T. aestivum, endophytically colonise roots of non‐ectomycorrhizal plants in natural environments. New Phytologist225(6), 2542-2556.  https://doi.org/10.1111/nph.16321
Schütz, J.P. (1999). Close-to-nature silviculture: is this concept compatible with species diversity?. Forestry72(4), 359-366.  https://doi.org/10.1093/forestry/72.4.359
Sepahvand, D., Shirvany, A., Etemad, V., Javan-Nikkhah, M., DeLuca, T.H., & Khalilabad, A.A. (2021). The first report of Choiromyces venosus and a new report of Tuber aestivum from north Hyrcanian forest of Iran. Central Asian Journal of Plant Science Innovation1(3), 151-159. 10.22034/CAJPSI.2021.03.03
Slankis, V. (1974). Soil factors influencing formation of mycorrhizae. Annual Review of Phytopathology12(1), 437-457. 10.1146/annurev.py.12.090174.002253
Smirnoff, N. (1993). Tansley Review No. 52. The Role of Active Oxygen in the Response of Plants to Water Deficit and Desiccation. The New Phytologist, 125(1), 27–58. http://www.jstor.org/stable/2557905
Smith, S.E., & Read, D.J. (2010). Mycorrhizal symbiosis. Academic press.
Szabados, L., & Savouré, A. (2010). Proline: a multifunctional amino acid. Trends in plant science15(2), 89-97. 10.1016/j.tplants.2009.11.009
Trappe, J.M., & Castellano, M.A. (1991). Keys to the genera of truffles (Ascomycetes). McIlvanea10, 47-65.
Turgeman, T., Ben Asher, J., Roth-Bejerano, N., Kagan-Zur, V., Kapulnik, Y., & Sitrit, Y. (2011). Mycorrhizal association between the desert truffle Terfezia boudieri and Helianthemum sessiliflorum alters plant physiology and fitness to arid conditions. Mycorrhiza21, 623-630. https://doi.org/10.1007/s00572-011-0369-z
Velikova, V., Yordanov, I., & Edreva, A.J.P.S. (2000). Oxidative stress and some antioxidant systems in acid rain-treated bean plants: protective role of exogenous polyamines. Plant science151(1), 59-66. https://doi.org/10.1016/S0168-9452(99)00197-1
Xiong, S., Wang, Y., Chen, Y., Gao, M., Zhao, Y., & Wu, L. (2022). Effects of drought stress and rehydration on physiological and biochemical properties of four oak species in China. Plants11(5), 679. https://doi.org/10.3390/plants11050679
Yin, C., Wang, X., Duan, B., Luo, J., & Li, C. (2005). Early growth, dry matter allocation and water use efficiency of two sympatric Populus species as affected by water stress. Environmental and Experimental Botany53(3), 315-322. https://doi.org/10.1016/j.envexpbot.2004.04.007
Zamani, S.M., Kazerani, F., Rabbani Nasab, H., & Ghanaei, S. (2023). Diversity and population structure of ectomycorrhizal fungi in forest habitats of summer truffle (Tuber aestivum Vittad. Iranian Journal of Forest14(4), 407-424.in Persian 10.22034/ijf.2022.333059.1860
Zambonelli, A., Iotti, M., & Hall, I. (2015). Current status of truffle cultivation: recent results and future perspectives. Italian journal of mycology44, 31-40. ttps://doi.org/10.6092/issn.2465-311X/5593
Zhang, X., Ye, L., Kang, Z., Zou, J., & Li, X. (2019). Mycorrhization of Quercus acutissima with Chinese black truffle significantly altered the host physiology and root-associated microbiomes. PeerJ7, e6421. https://doi.org/10.7717/peerj.6421

  • تاریخ دریافت 30 تیر 1403
  • تاریخ بازنگری 19 شهریور 1403
  • تاریخ پذیرش 14 مهر 1403